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头颈部肿瘤逐步进展的单细胞转录组分析

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发表时间:2023-03-06 11:22作者:武汉新启迪Xinqidibio

摘要

头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)经历了从正常组织到癌前白斑、原发性HNSCC和转移肿瘤的逐步发展。为了描述肿瘤细胞的异质性及其在HNSCC进展过程中的相互作用,我们采用单细胞RNA-seq分析正常到转移肿瘤。我们可以在白斑病变中识别出病理检查未检测到的原位癌细胞。此外,我们鉴定了半乳糖凝集素7B的细胞类型亚群(LGALS7B)-表达恶性细胞和CXCL8-表达成纤维细胞,表明它们在肿瘤组织中的丰度与不利的预后结果相关。我们还证明了相互依赖的配体-受体相互作用COL1A1和CD44成纤维细胞和恶性细胞之间,促进HNSCC进展。此外,我们报道了白斑和HNSCC组织中的调节性T细胞表达LAIR2,为肿瘤生长提供了有利的环境。综上所述,我们的结果更新了HNSCCs逐步发展过程中细胞间相互作用的病理生物学见解。

介绍

头颈部鳞状细胞癌(HNSCCs)是第六大常见癌症类型,包括口腔癌、咽癌和喉癌。HNSCC的诊断和治疗水平稳步提高;然而,晚期高分化鳞状细胞癌的5年生存率仍不理想,约为50-60%1。以前,大规模基因组图谱研究,如癌症基因组图谱(TCGA),已经证明了HNSCC的分子异质性,为HNSCC进展的病理生物学提供了新的见解2。然而,对大块组织的研究在区分肿瘤微环境细胞(如免疫细胞和基质细胞)对癌症进展的影响方面受到显著限制。单细胞RNA-seq (scRNA-seq)技术的最新进展使得有可能克服这些限制,在单细胞水平上区分基因表达的变化,并为肿瘤组织中不同细胞类型之间的相互作用提供新的见解3.

HNSCC经历了从正常组织(NL)到癌前白斑(LP)的逐步进展,接着是原发性癌症(CA),最终是淋巴结中的转移性肿瘤(LN)。LP以不同的速度发展成恶性肿瘤;4因此,已经努力基于LP进展率来预测癌前病变的恶性进展。然而,LP恶性转化的分子机制仍不清楚。


此外,各种病因也参与了HNSCC的发展,包括接触酒精或烟草和人类乳头瘤病毒(人乳头瘤病毒)感染5,6,7。特别是,人乳头瘤病毒感染在HNSCC进展中起着关键作用,在人乳头瘤病毒阳性患者中显示出比人乳头瘤病毒阴性患者更好的预后结果8。基因组分析也表明,在人乳头瘤病毒阳性患者中,先天性和获得性抗病毒免疫反应受到抑制2.

在这项研究中,我们对非肿瘤周围的NL、LP、CA和LN组织进行了scRNA-seq分析,以描述单细胞水平的变化和细胞间的相互作用,这些变化和相互作用有助于HNSCC从非肿瘤性病变逐步发展为转移性肿瘤。考虑到人乳头瘤病毒的机械和临床影响,我们根据人乳头瘤病毒感染状态仔细分析单细胞转录物。我们证明了HNSCC进展过程中细胞成分的逐步变化,识别了恶性、间质和免疫细胞的细胞群。我们的结果揭示了肿瘤细胞及其微环境之间的细胞间相互作用,为HNSCCs提供了关键的机制和临床见解。

结果

HNSCC逐步进展的scRNA-seq图谱

从23名HNSCC患者获得了scRNA-seq谱,包括NL的组织类型(n= 9)、LP(n= 4),CA(n= 20),而LN(n= 4)(图。1a和补充表格1).将总共54,239个细胞聚类成16个簇,基于已知细胞类型标记基因的差异表达将这些簇指定为9种细胞类型,包括上皮细胞、成纤维细胞、内皮细胞、肌细胞、免疫NK/T细胞、B/浆细胞、巨噬细胞、树突细胞和肥大细胞(图。1b和补充图。1a).细胞群与组织类型、人乳头瘤病毒感染状态和患者样本相关(图。1c).人乳头瘤病毒阳性患者的LP组织不可用;因此,他们被排除在分析之外。当根据人乳头瘤病毒感染状态评估细胞组成时,与人乳头瘤病毒阴性肿瘤相比,人乳头瘤病毒阳性肿瘤表现出较低比例的成纤维细胞(11.49%对1.02%),但较高比例的NK/T细胞(48.50%对25.05%)和B/浆细胞(22.79%对13.87%)(图。1d和补充图。1b).这一发现与先前的研究一致,表明人乳头瘤病毒阳性肿瘤中免疫细胞的功能改变9, 10.

aHNSCC逐步发展的示意图。b54,239个细胞的细胞类型显示在UMAP图中。c显示了组织类型的分布、人乳头瘤病毒感染状态和单个患者。d上皮细胞的主要细胞类型的细胞组成(n= 6106)、成纤维细胞(n= 12,336),NK/T细胞(n= 17,869),以及B/浆细胞(n= 7,437)根据组织类型和患者的人乳头瘤病毒感染状态显示。数据点代表每个样品中细胞类型比例的平均值。箱形图显示中位数(中心线)、上下分位数(方框)和数据范围(须状)。源数据在源数据文件中提供。

DNA拷贝数依赖的去监管化TP63和ATP1B3在LP组织中

接下来,我们用推断方法推断了重复出现的DNA拷贝数畸变11具有排除共表达的功能性基因簇和非复发性畸变影响的改进修饰(详情见“方法”)。CA和LN组织的上皮细胞表现出深度CNAs,但其他基质细胞没有(补充图。2a).与之前的研究一致12, 13人乳头瘤病毒阴性肿瘤显示出比人乳头瘤病毒阳性肿瘤更高的DNA拷贝增益(每个细胞具有CNAs的平均基因数= 245.2对111.7,P < 3.0 × 10–16,图。2a).在LP组织中,我们观察到80个上皮细胞含有类似于恶性细胞的CNAs,我们称之为原位癌(CIS)细胞。比较人乳头瘤病毒阴性患者NL和LP组织的CNAs,CIS细胞在1q、3q、8q、20p和22q显示显著的DNA拷贝增加,在3p、10p和10q显示损失,证实了先前的发现14(图。2b).顺式细胞开始表达TNF-α/NF-kB、凋亡、P53、雌激素反应、缺氧、PI3K/AKT/mTOR和糖酵解相关基因,并且在恶性细胞中进一步加重(图。2c).基因水平分析显示,与上皮细胞相比,顺式表达已知的肿瘤标记基因[例如, CXCL1, EFNA1, TM4SF1, ELF3和角蛋白细胞骨架基因(即, KRT19, KRT13, KRT18,以及KRT8)],表明其恶性特征15,16,17(折差> 1,置换学生的t检验P < 0.0001, Fig. 2d).

a对于每种组织类型,CNA增益的对数标度频率(顶端)和损失(底部)中显示了人乳头瘤病毒阴性和人乳头瘤病毒阳性样品。bCNA频率显示在每种人乳头瘤病毒阴性组织类型的染色体序列中。c, d点状图显示了标志基因组的差异表达(c)和基因(d)在跨越NL、LP、CIS和CA/LN组织的组织类型的上皮细胞中。eCNA的频率(左边的)和表达水平(正确)的TP63和ATP1B3显示了人乳头瘤病毒阴性患者的基因。fDNA拷贝数相关的转录表达TP63和ATP1B3显示在人乳头瘤病毒阴性的TCGA-HNSCC患者(n= 240).gMSKQLL1和SCCQLL1细胞用非靶对照(NC)si处理TP63,或siATP1B3,并且它们的存活性在指示的时间显示。h用NC,si转染FaDu细胞TP63,或siATP1B3并使用悬滴板在球状体中培养,细胞生存力显示为(顶端).FaDu单元的横截面积(左下角)和死细胞的数量(右下角)与NC、si的处理TP63,或siATP1B3,均已显示。n= 8个生物学独立的实验。比例尺,50 μmiMSKQLL1和SCCQLL1细胞用NC、siTP63,或siATP1B3,并显示了它们的细胞增殖、迁移和侵袭。n= 3个生物学独立的实验。比例尺,100微米英寸g–i数据显示为平均值±标准差。*,P  <  0.05; **,P  <  0.01; ***,P  <  0.001; ns, nonsignificant by the Student two-tailed unpaired t-测试。在…里a, e,盒状图显示中位数(中线)、上下分位数(盒状)和数据范围(须状)。源数据在源数据文件中提供。

以前,CNA依赖性转录失调被认为在癌症进展中起驱动作用18。考虑到这一点,我们鉴定了CNA依赖性基因,这些基因具有不同的DNA拷贝数,并伴随着跨组织类型的转录失调(n= 8,置换学生的t检验P < 0.001 and fold difference > 1, Supplementary Fig. 2b,参见补充方法). TP63和ATP1B3在染色体3q,在人乳头瘤病毒阴性顺式细胞中表现出最显著的CNA依赖性转录失调(图。2e).我们可以在人乳头瘤病毒阴性的TCGA-HNSCC数据中验证这一结果,显示CNAs和转录水平之间的显著相关性TP63 (r= 0.19,P= 2.5 × 10–3)和ATP1B3 (r= 0.37,P= 2.0 × 10–9)(图。2f).这些基因的致癌活性已在各种癌症类型中显示19, 20,这可以通过进行siRNA介导的敲除实验来验证。siRNAs靶向治疗TP63(siTP63)或者ATP1B3(siATP1B3)显著抑制HNSCC细胞的肿瘤促进功能,包括细胞生存力、肿瘤球形成、迁移和侵袭(图。2g、h、I和补充图。3).这些结果一致支持CNA依赖的表达TP63和ATP1B3在恶变前的LP病变中,LP病变在HNSCC的进展中起着关键作用。

恶性细胞群CC1具有侵袭性表型

接下来,我们将CA和LN组织中的上皮细胞指定为恶性细胞(n= 5,113).为了评估转录异质性,将恶性细胞细分为六个簇(CC0至CC5,图。3a, 顶端,参见补充方法).我们观察到每一对配对的原发性和转移性肿瘤(CA和LN)聚集在一起,如前所述21(图。3a, 底部).此外,我们观察到转移肿瘤的恶性细胞群的细胞组成与配对的原发性肿瘤非常相似,揭示了每对原发性和转移性肿瘤在分级聚类分析中聚类在一起(图。3b).这一结果表明,原发性肿瘤的转录多样性在转移性肿瘤中是保守的。

a恶性细胞群(CC0-CC5,顶端)和样品(底部)显示在t-SNE图中。显示成对的原发性和转移性肿瘤(虚线圆圈). b恶性肿瘤簇的分级聚类显示成对的原发性和转移性肿瘤的相似细胞比例(强调). c恶性细胞群的累积细胞比例显示在TCGA-HNSCC(n= 500).d人乳头瘤病毒感染状态显示在t-SNE图中(顶端).显示了恶性细胞群中人乳头瘤病毒阳性和人乳头瘤病毒阴性细胞的细胞计数(底部). e根据所有患者的肿瘤亚部位(所有,n= 500),OP(n= 71),而OC(n= 308),显示了人乳头瘤病毒阳性和人乳头瘤病毒阴性组织中CC0和CC1恶性细胞簇的比例。f点图显示了HNSCC单细胞恶性程序的平均表达水平,包括缺氧、应激、上皮分化、p-EMT和每个恶性簇中的细胞周期。g森林图显示了在去卷积的TCGA-HNSCC数据中,每个恶性细胞群的高比例组和低比例组(> 70个百分点)之间os和RFS的风险比(顶端).CC2未显示,因为其第70百分位的细胞比例为零。危险比和95%的置信区间(CI)被指出。*,P  <  0.05 and **,P  <  0.01, log-rank test. Kaplan–Meier’s plot analyses for OS (左边的)或RFS(正确)分别显示在TCGA-HNSCC、GSE41613和GSE42743(底部). P= 0.02(OS;TCGA-HNSCC),P= 0.006(RFS;TCGA-HNSCC),P= 0.003(OS;GSE41613),P= 0.016(OS;GSE42743),对数秩检验。OS和RFS的随访时间缩短至5年。h的表达水平LGALS7B恶性细胞群显示。i在CC1-高和CC1-低样品中显示了LGALS7B表达的免疫组织化学染色的代表性图像。n= 1.比例尺,100米英寸e, h,盒状图显示中位数(中线)、上下分位数(盒状)和数据范围(须状)。源数据在源数据文件中提供。

接下来,我们进行了去卷积分析,以评估TCGA-HNSCC的大量RNA-seq数据中的细胞类型比例(n= 500,补充方法).与scRNA-seq数据不同,去卷积分析显示恶性细胞是最丰富的细胞类型(79.17%),其次是成纤维细胞(10.07%)(补充图。4a).在恶性细胞中,CC0和CC1是最丰富的恶性细胞群(图。3c).在GSE41613(n= 97)22,GSE42743(n= 74)22和GSE65858(n= 270)23,证明了我们的结果的稳健性(补充图。4b).有趣的是,我们发现根据人乳头瘤病毒感染状态,恶性细胞簇的位置非常接近(图。三维(three dimension的缩写), 顶端).CC0和CC4细胞大部分是人乳头瘤病毒阳性肿瘤,而其他细胞群是人乳头瘤病毒阴性肿瘤(图。三维(three dimension的缩写), 底部).这一发现表明我们的恶性细胞群具有与人乳头瘤病毒感染相关的独特转录程序。此外,肿瘤消退(例如口咽和口腔)与人乳头瘤病毒感染状态有关;24然而,我们没有观察到恶性细胞簇和肿瘤亚部位之间的显著联系(图。3e).

我们还评估了我们的恶性细胞群是否可以在独立的scRNA-seq数据集中找到。使用最近模板预测(NTP)分析对恶性细胞进行分型可以分别重新识别GSE103322 (77.16%)和GSE164690 (99.10%)中的恶性细胞群(补充图。5);然而,我们的细胞亚型并没有覆盖恶性细胞的所有异质性,这可能是由于取样的患者数量较少。这可能支持我们的恶性细胞群代表了HNSCC的大多数恶性细胞类型。此外,我们检测了每个恶性细胞群中HNSCC先前单细胞恶性细胞程序的表达21。CC0表达缺氧和上皮分化相关基因,而CC1表达部分上皮-间质转化(p-EMT)相关基因(图。3f).p-EMT已经被建议定位在靠近癌症相关成纤维细胞(caf)的前沿,并且通过caf和恶性细胞之间的旁分泌相互作用而被促进,导致HNSCC的侵袭性进展。为了支持这一点,我们可以证明,与CC1-低组相比,CC1-高组(> 70%的CC1)具有更不利的总体生存率临床结果(OS;危险比[HR] = 1.38,P= 0.02)和无复发生存率(RFSHR = 1.69,P= 0.006),尽管其他恶性细胞群没有(图。3g, 顶端).使用GSE41613 (OS,HR = 2.30,P= 0.003)和GSE42743 (OS,HR = 2.16,P= 0.016)(图。3g, 底部).多变量分析也揭示了CC1与HNSCC不良预后结果的相关性的显著性(GSE41613,OS,HR = 2.68,P= 0.001;GSE42743,OS,HR = 2.33,P= 0.011,补充表2).综上所述,我们认为CC1的丰度与获得侵袭性表型的人乳头瘤病毒阴性肿瘤样特征的表达相关。

接下来,我们鉴定了可能代表每个簇的差异表达基因(Wilcoxon秩和检验P < 0.001, fold difference > 1, Supplementary Fig. 6).我们发现CC1显著表达了LGALS7B(图。3h),这可以通过显示以下表达式来验证LGALS7B在CC1-高样本中(即C04、C30、C51、C26、C07、C06、C31和C15),但不在CC1-低样本(C38和C09)中(图。3i和补充图。7).半乳糖凝集素-7在包括HNSCC在内的多种癌症类型中具有促瘤功能25,26,27因此,CC1的侵袭性特征可能与p-EMT的表达有关LGALS7B.

成纤维细胞衍生的COL1A1表达式与交互CD44在恶性细胞中

成纤维细胞是去卷积分析中第二常见的细胞类型(见补充图。4a).我们可以在每种细胞类型的上皮/恶性细胞(n= 17,例如, KRT6A)和成纤维细胞(n= 41,例如, 波斯特恩)(补充图。8),这可以通过伪时间轨迹分析更清楚地证明28(图。4a).有趣的是,我们观察到LP的假时间更接近CA或LN,而不是NL,这可能表明恶变前LP成纤维细胞已经获得了CAF样特征(图。4b).为了进一步描述成纤维细胞的转录改变对癌症进展的影响,我们分析了成纤维细胞和恶性细胞之间的配体-受体(LR)相互作用(详情见补充方法).我们的目的是确定恶性细胞和成纤维细胞之间相互依赖的LR对,它们在恶性细胞中显示受体表达,但其相应的配体仅在成纤维细胞中表达,而在恶性细胞中不表达。我们可以鉴定出7个LR对,显示成纤维细胞中配体的相互依赖和逐步表达(即., COL1A1,COL1A2,COL6A3,THBS1,THBS2,TNC,以及LAMA4)和它们在恶性细胞中相应的假定受体(即, CD44,ITGB1,SDC4,CD47,以及ITGA6,图。4c).值得注意的是COL1A1-CD44配体-受体对表现出最突出和相互依赖的表达(图。4d, 顶端),并且可以通过Puram的scRNA-seq数据进行验证(图。4d, 底部).此外,COL1A1表达与成纤维细胞的假时间最显著相关(r= 0.57,P < 2.2 × 10−16,补充图。9a).我们可以成功地证明COL1A1在成纤维细胞和CD44在上皮细胞(r= 0.43,P= 7.47 × 10−3,图。4e和补充图。9b).然而,CD44成纤维细胞中的表达与COL1A1表情(补充图。9c).这些结果表明CD44-COL1A1成纤维细胞和恶性细胞之间发生相互作用,但不是以自分泌的方式。免疫组织化学分析也证明了表达CD44的恶性细胞附近的成纤维细胞中显著的COL1A1表达(图。4f和补充图。9d).

aNL、LP、CA和LN的组织类型(左边的)和伪时间(正确)显示在UMAP图中。b显示了成纤维细胞中的伪时间在组织类型中的分布。c热图显示了在成纤维细胞和恶性细胞之间的HNSCC进展期间,配体-受体对的相互依赖的表达和逐步表达。d的已表达细胞的细胞比例COL1A1和CD44在组织类型的成纤维细胞(F-)和恶性细胞(C-)中显示例如。,F-NL,NL中的成纤维细胞;c-n1,n1中的恶性细胞)来自我们的数据(顶端)和GSE103322(底部). e相关图显示COL1A1成纤维细胞和CD44HNSCC患者上皮细胞的表达水平。灰色阴影表示95%的置信区间(CI)。f免疫组织化学图像显示成纤维细胞中胶原和CD44的表达(红色)和邻近的恶性细胞(绿色的),分别为。n= 3.gsiRNAs靶向处理的MSKQLL1和SCCQLL1细胞的侵袭CD44(siCD44)或非靶对照(NC)在胶原蛋白(1 g/mL)存在或不存在的情况下。n= 3.比例尺,400米hMSKQLL1细胞和CAF细胞在NC、siCD44,或siCOL1A1,以及迁移细胞的图像(左边的)和测量的细胞群(正确)显示。n= 3个生物学独立的实验。比例尺,100 μm。数据显示为平均值±SD。*,P  <  0.05; **,P  <  0.01; ***,P  <  0.001; ns, nonsignificant by the Student two-tailed unpaired t-测试。源数据在源数据文件中提供。

此外,我们还评估了COL1A1-CD44通过进行siRNA介导的敲除实验进行相互作用COL1A1(siCOL1A1)和CD44(siCD44).两种HNSCC细胞系表达CD44(MSKQLL1和SCCQLL1,补充图。10a)和咖啡馆表达COL1A1(CAF48)被选择(补充图。10b).我们观察到用胶原蛋白(I型)处理诱导了肿瘤细胞的侵袭,而用si转染则消除了这种侵袭CD44(图。第四代移动通信技术).此外,MSKQLL1和CAF48的共培养增强了肿瘤细胞的迁移,但没有si的共培养CD44-用CAF48转染的MSKQLL1细胞或用si转染的MSKQLL1细胞COL1A1转染的CAF48细胞(图4h).综上所述,我们建议COL1A1在成纤维细胞和CD44上皮/恶性细胞相互作用,促进肿瘤发展。

CXCL8-表达caf会加重HNSCC进展

来自肿瘤组织(CA和LN)的caf进一步分为五个簇(CF0至CF4),揭示了它们的代表性标记基因(图。5a和补充图。11a).当CAF群与Puram研究中以前的CAF群进行比较时21CF0和CF4与表达其标记基因(例如., CTHRC1, COL1A1, COL3A1, 波斯特恩,以及MFAP2,图。5b).然而,CF4不同于CF0,表现出更高的增殖活性(补充图。11b).CF2和CF3类似于Puram的CAF2和肌成纤维细胞,表达它们的标记基因,例如CXCL12和NDUFA4L2。有趣的是,我们发现了一种CAF亚型,CF1,表达CXCL8(IL-8编码基因)。在二维扩散图嵌入分析中,CF1显示出不同于其他CAF簇的独特表达模式29(图。5c, 左边的).伪时间投影分析也揭示了CF1是最后的轨迹,这意味着CF1是进展最快的成纤维细胞(图。5c, 正确).此外,我们证明了CF1的丰度与肿瘤的生长显著相关CXCL8TCGA-HNSCC独立数据集中的表达水平(r= 0.38,P= 2.72 × 10−18),GSE41613(r= 0.74,P= 3.41 × 10−18),GSE42743(r= 0.62,P= 3.54 × 10−9),以及GSE65858(r= 0.68,P= 9.58 × 10−38,图。5d).当我们根据人乳头瘤病毒感染状态比较CAF亚型的比例时,在人乳头瘤病毒阴性肿瘤中观察到大多数CF1细胞,但在人乳头瘤病毒阳性肿瘤中没有观察到(P= 1.33 × 10−7,补充图。11c,左侧).TCGA数据还显示,CF1细胞在人乳头瘤病毒阴性肿瘤(10.15%)中比人乳头瘤病毒阳性肿瘤(5.04%)中更丰富(P= 5.26 × 10−7,补充图。11c,右).

aCAF聚类显示在t-SNE图中(CF0-CF4)。bCAF1、CAF2、肌成纤维细胞(myoFib)和CF1标记的表达水平,CXCL8显示在t-SNE曲线中。c扩散图显示了CAF簇(CF0-CF4,左边的).跨CAF聚类的伪时间分数被示出(正确). d相关图显示CXCL8TCGA-HNSCC、GSE41613、GSE42743和GSE65858独立数据集中CF1的表达水平和细胞比例。e图表显示了合并的HNSCC数据中CC1和CF1的比例之间的相关性(TCGA-HNSCC,GSE41613,GSE42743和GSE65858,n = 941)。在…里d, e灰色阴影表示95%的置信区间(CI)。f CXCL8存在或不存在时的表达水平半乳糖凝集素-7显示在HNSCC细胞(SCCQLL1和SNU1088)和CAF细胞(CAF30、CAF57、CAF58和CAF70)中。P= 0.0025 (SCCQLL1),P= 0.0457 (SNU1088),P= 0.0007 (CAF30),P= 0.0011 (CAF57),P= 0.0002 (CAF58),P= 0.0002 (CAF70)。n= 3个生物学独立的实验。数据显示为平均值±标准差。*,P  <  0.05; **,P  <  0.01; ***,P  <  0.001; ns, nonsignificant by the Student’s two-tailed unpaired t-测试。源数据在源数据文件中提供。

接下来,我们评估了CF1和CC1的丰度是否相互关联,因为CF1和CC1的丰度都具有攻击性特征。正如预期的那样,CC1和CF1丰度在合并的HNSCC数据中显著相关(r= 0.41,P= 1.11 × 10−38,图。5e),暗示CF1和CC1可能共同作用。事实上,半乳糖凝集素-7(在CC1中表达)促进各种癌症类型的转移,包括HNSCC30。IL-8(在CF1中表达)由促进肿瘤进展的多种细胞类型产生31, 32。为了评估这一假设,我们证明了半乳糖凝集素-7治疗显著诱导CXCL8在各种CAF细胞(CAF30、CAF57、CAF58和CAF70)以及HNSCC细胞(SCCQLL1和SNU1066)中的表达(图。5f).相比之下,IL-8治疗没有诱导半乳糖凝集素-7在HNSCC的牢房里。(补充图12).这些结果表明,半乳糖凝集素-7激活恶性细胞(CC1)和成纤维细胞(CF1)表达IL-8,促进HNSCC的侵袭性进展。

Treg细胞中LAIR2的表达与HNSCC进展相关

在免疫细胞中,NK/T细胞是scRNA-seq数据中最常见的细胞类型。具有染色体畸变的细胞被重新指定为非确定细胞类型,并在以下分析中排除(见“方法”)。然后,将NK/T细胞群进一步分为六个亚群;幼稚T细胞、CD8+CCL5+、CD4+FOXP3+(调节性T细胞,Treg)、CD4+CD154+(滤泡辅助性T细胞)、循环T细胞和NK细胞(图。6a,顶端).显示较高增殖活性的T细胞群被称为循环T细胞,其显示CD8编码基因的较高表达(即, CD8A和CD8B)比CD4抗艾滋病药(Cluster of Differentiation 4)如前所述33(图。6a, 底部和补充图。13a).在HNSCC进展过程中,循环T细胞和CD4+ T细胞的比例增加,而无论其人乳头瘤病毒感染状态如何,幼稚T细胞和CD8+ T细胞的比例都下降(图。6b).伪时间轨迹分析证明了T细胞根据组织类型的逐步转变(图。6c).值得注意的是,LP中的Tregs表现出两个伪时间分布的峰值,表明了癌前病变中T细胞状态的改变。特别是,我们观察到白细胞相关免疫球蛋白样受体2(LAIR2, CD306)在LP中的Tregs(置换学生的t-testP= 2.50 × 10−9,折差= 2.32,图。6d和补充图。13b).虽然的功能LAIR2很大程度上是未知的,LAIR2已知为激活促炎过程的可溶性胶原受体34。因此,COL1A1成纤维细胞中的表达可以激活LAIR2Tregs介导的下游信号传导。为了证明这一点,我们观察到COL1A1成纤维细胞中的表达水平较弱,但显著相关LAIR2表达水平(r= 0.48,P= 2.48 × 10−3)和丰富的Tregs(r= 0.38,P= 2.60 × 10−2,图。6e).此外,我们证明胶原蛋白治疗显著诱导FOXP3小鼠Tregs中的表达(图。6f和方法).此外,通过进行荧光激活细胞分选(FACS)分析,我们证实胶原蛋白治疗增加了从HNSCC患者PBMCs中获得的FOXP3+CD25+ Tregs和LAIR2+FOXP3+CD25+ Tregs的数量(图。6克,高和补充图。13c和“方法”)。综上所述,我们认为来自成纤维细胞的胶原蛋白与Tregs相互作用,诱导LAIR2和FOXP3表达,并为肿瘤进展提供有利的微环境。

at-SNE图显示了T/NK细胞群,包括幼稚T (IL7R+)、CD8+CCL5+、Treg (CD4+FOXP3+)、CD4+CD154+、循环T和NK细胞(顶端).ND,未确定。显示了T细胞群中细胞的增殖分数和数量(底部). b箱线图显示了根据组织类型和人乳头瘤病毒感染状态的T细胞簇的比例。双侧的统计显著性t-指示进行测试。c根据组织类型和人乳头瘤病毒感染状态显示了每个T细胞群中伪时间的分布。dt-SNE曲线显示了LAIR2Tregs中的表达式(左边的).逐步表达LAIR2在跨越组织类型的Tregs中显示(正确). e相关图显示了COL1A1成纤维细胞的表达水平。LAIR2Tregs中的表达水平(左边的)或Tregs的比例(正确)跨越组织类型。95%置信区间(CI)用灰色表示。f FOXP3通过RT-PCR分别测量用或不用I型胶原(10 g/mL)处理的Tregs中的表达水平(见“方法”)。n= 3个生物学独立的实验。数据显示为平均值±标准差。g代表性的FACS分析显示了PBMCs中FOXP3+CD25+Tregs的百分比(左边的).点图显示了分别用磷酸盐缓冲盐水(PBS)或胶原I处理的PBMCs中FOXP3+CD25+Tregs的百分比(正确). P= 0.0194.对于每组,评估来自5名患者的PBMCs。h代表性的FACS分析显示了用PBS或胶原蛋白处理的PBMCs中的LAIR2 +FOXP3+Tregs分别(左边的).点图显示了分别用PBS或胶原I处理的PBMCs中LAIR2+FOXP3+CD25+Tregs的百分比(正确). P= 0.0298.在…里g, h对于每组,评估来自五名患者的PBMCs。*,P  <  0.05; **,P  <  0.01; ***,P  <  0.001; ns, nonsignificant by the Student two-tailed unpaired t-测试。在…里a, b, d,盒状图显示中位数(中线)、上下分位数(盒状)和数据范围(须状)。源数据作为源数据文件提供。

讨论

作为TCGA的下一步,使用大规模、多组癌症谱阐明分子异质性,详细描述连续变化的癌前图谱将有利于描述癌症进展期间的驱动事件。在这项研究中,我们旨在描述HNSCC从淋巴结到癌前LP、CA和转移性淋巴结组织的逐步进展,并展示HNSCC逐步进展过程中单细胞水平的转录动力学。关于恶性细胞、成纤维细胞和免疫细胞之间相互作用的关键发现总结于图。7.

总结了关于恶性细胞、成纤维细胞和免疫细胞之间相互作用的关键发现。

我们证明了LP组织有大量的顺式细胞,这些细胞显示出DNA拷贝增加和伴随的转录调控。TP63和ATP1B3。事实上,从患者P15中鉴定出大多数顺式细胞,显示出与CA组织中的恶性细胞相似的CNAs(补充图。14).众所周知,严重的鳞状不典型增生或顺式引起的白斑具有更高的进展为浸润性癌的速率35。事实上,患者P15在2019年被诊断为上皮异常增生,当时进行了scRNA-seq。不幸的是,该患者在2021年被重新诊断为CIS。该患者的临床过程表明,scRNA-seq分析可以帮助比常规病理学测试更准确和更早地诊断病变。

此外,我们的分析可以识别促进HNSCC进展的细胞间相互作用。COL1A1-CD44信号介导成纤维细胞和恶性细胞之间的相互作用(见图。4).此外,恶性细胞的子集(LGALS7B-表达CC1)与CAF的子集(CXCL8-表达CF1)(见图。5).根据这些结果,我们建议COL1A1-CD44介导成纤维细胞与恶性细胞的相互作用,而LGALS7B-CXCL8介导恶性细胞-成纤维细胞相互作用。

免疫细胞是肿瘤微环境中必不可少的调节成分。我们证明了在HNSCC进展过程中T细胞储备的逐步改变,这意味着恶性肿瘤前免疫环境的改变。支持这一观点的是,HNSCC的癌前病变显示出炎性T细胞的改变和Tregs浸润的增加,促进了肿瘤的发展36, 37。值得注意的是,我们观察到Tregs表现出从NL到LP的转录转换,表达LAIR2. LAIR2先前的研究表明,这种表达与癌症的良好预后相关38,而矛盾的结果也表明LAIR2是肝癌中T细胞衰竭和预后不良的潜在标志39. LAIR2对各种胶原分子具有高亲和力,与LAIR1介导的信号传导;34然而,我们观察到LAIR1NK/T细胞中的表达水平相当低;因此,它们不太可能相互竞争(补充图。15).根据我们的结果,我们建议COL1A1-LAIR2成纤维细胞和Tregs之间的相互作用为肿瘤的发展和进展提供了一个允许的微环境。

除了Tregs之外,CD154-表达CD4+ T细胞在肿瘤发展过程中增加(见图。6b). CD154是一个CD40促进细胞间相互作用的配体CD40-表达细胞,包括B细胞、巨噬细胞和滤泡辅助性T细胞40. CD154诱导细胞增殖和侵袭以及不良预后,这意味着CD154+T细胞提供了促进肿瘤的免疫环境41。相比之下,循环T细胞建立了一个功能失调的程序和肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)激活33。我们一致地证明了循环T细胞标记物的表达水平与功能障碍T细胞标记物的表达水平显著相关(r= 0.47,P= 1.5 × 10−28)和TIL分数(r= 0.3,P= 3.66 × 10−12,补充图。16).虽然我们没有进一步评估CD154+CD4 T细胞和循环T细胞的功能,但我们的结果表明,T细胞库的改变在HNSCC的逐步进展中起着关键作用。

我们使用去卷积分析评估组织中的细胞比例。根据样品制备和实验程序,单个样品中的细胞组成可能高度不均匀。因此,从scRNA-seq获得的细胞比例可能不代表组织中的实际细胞比例。在这项研究中,我们使用大量RNA-Seq数据的去卷积分析来比较细胞组成,这可以估计组织中的细胞组成。事实上,我们在去卷积分析中识别了大部分恶性细胞,尽管scRNA-seq数据仅检测到低比例的恶性细胞。我们的分析表明,除了测量细胞转录表达的变化之外,测量细胞类型的比例变化可以根据微环境变化反映癌症进展。

总之,我们提供了在HNSCC逐步发展过程中单细胞水平异质性和相互作用的见解。针对驱动HNSCC进展的细胞间相互作用将是HNSCC治疗的关键策略。










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