职业吞噬细胞对肺炎球菌的细胞内杀伤作用不受IAV感染的影响 在肺部,居民和被招募的免疫细胞在随后的细菌暴露之前首先受到IAV的攻击。为了模仿这种感染顺序,专业的吞噬细胞在这个特定的顺序受到病原体的挑战。为了研究IAV感染是否影响专业吞噬细胞杀伤肺炎球菌的能力,对人原代单核细胞和巨噬细胞对H1N1的敏感性进行了分析。 沙一 a)。在此基础上,采用0.1的MOI进行复合感染实验。三种细胞类型均感染肺炎球菌株19F。与以前的H1N1感染无关,胞内细菌被吞噬细胞清除。单一感染细胞与共感染细胞在杀灭细菌方面没有差异(图一)。 沙一 (b-D)此外,还测试了小鼠单核/巨噬细胞的病原清除特性。首先,在J 774细胞中证实了IAV的复制。 沙一 e)。肺炎球菌在单个和共感染的J 774细胞中的杀伤分析反映了人类的表型。然而,细菌清除延迟了19小时(如图所示)。 沙一 f)。这些结果表明,IAV感染并不影响这些细胞类型的一般杀伤功能。
肺炎链球菌19F对C57BL/6J小鼠的定植 为了模拟自然混合感染,使用肺炎球菌株是至关重要的,该菌株能够对小鼠进行定植。侵袭性肺炎球菌株(如TIGR 4)要么引起急性严重感染,要么在使用低初始接种量时被清除。 22 。因此,它的定殖特性 S. 肺炎 19F菌株是一种典型的与人类定植相关的血清型。定植是指URT中稳定的细菌负荷和无局部及全身炎症。初期定植的特点是体重下降,临床评分在细菌应用后第一天略有增加。在接下来的三天内,这两个参数都正常化了。 1 A、B)。 S. 肺炎 19只小鼠连续7天稳定定植,第7天肺内未检出细菌。 1 c,D)。为了排除持续的局部或全身炎症反应,我们测定了蛋白质和趋化因子浓度以及白细胞分化(WBC)。 1 (e-i)局部和全身炎症在定植后3天内开始增加。
图1 C57BL/6J小鼠对 肺炎链球菌 19F.殖民化。雌性C57BL/6J小鼠经鼻腔1×10定植 7 CFU S. 肺炎 19F(19F_C)或接受PBS挑战,连续监测7天以上。( A )重量和( B )每日监测临床评分。A和B中的水平虚线表示实验的终止条件(20%的体重减轻和/或临床评分为20)。CFU计( C )鼻腔冲洗(NAL)和( D )支气管肺泡液(BALF),( E )BALF中的蛋白质浓度,( F )白细胞分化(WBC)仅限于中性粒细胞和淋巴细胞计数,以及( G –I 在指定的时间点测定趋化因子的释放。水平虚线( C )和( D )指出检测的限度。每组4只小鼠进行两次独立实验(共8只)。通常,显示平均值±sd( A , B )。每个点表示一个鼠标和水平线,显示平均值( C –E )。数据载于( F –I )显示为方框情节。用kruskal Wallis检验和Dunn的多重比较后检验(N.S.,无显着性,*)确定pbs与所有其他组之间的显着性水平。 p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.001). Dotted lines in A and B reprsent.
非小鼠适应H1N1对C57BL/6J小鼠病毒性肺炎的轻微症状 小鼠适应的IAV菌株容易引起重症肺炎。为了只引起轻微的症状,小鼠感染了一种非小鼠适应的h1n1。 23 并监测疾病进展情况(图一)。 2 )。注意到剂量依赖性体重减轻和临床评分的增加(如图所示)。 2 A、B)。第四天,证实肺部存在病毒RNA(图一)。 2 c)。WBC显示循环中中性粒细胞水平升高(如图所示)。 2 d)。基于这些结果,1×10 5 PFU用于所有H1N1感染。
图2 C57BL/6J小鼠对非小鼠适应的H1N1 IAV敏感。C57BL/6J经鼻腔接种H1N1或PBS感染,连续4天监测。( A )重量和( B )每日测定临床评分。A和B中的水平虚线表示实验的终止条件(20%的体重减轻和/或临床评分为20)。( C )第4天,取肺,经IAV证实病毒感染。 NP -特异性qRT-PCR(虚线表示检测限)。( D 第4天测定白细胞计数和中性粒细胞计数。每组4只小鼠进行一次实验(共4只)。 A –D )。通常,显示平均值±sd( A , B )。每个点表示一个鼠标和水平线,显示平均值( C )。数据载于( D )显示为方框情节。PBS与其他各组之间的显着性水平( A )采用Kruskal Wallis检验和Dunn‘s多次比较后测。在( D ),Mann Whitney U -进行了测试(* p < 0.05).
肺炎早期局部和全身炎症反应 其次,在细菌定植后7天(也称为共感染),可诱发轻微的H1N1感染。单个H1N1感染起控制作用。为了追踪严重的反应,一组高剂量的肺炎球菌感染被包括在内(如图所示)。 3 a)。与严重肺炎球菌肺炎不同的是,n1n1感染的定植和非定殖小鼠的特点是两阶段的疾病过程,导致完全恢复(图一)。 3 b、c)。对鼻腔冲洗液(NAL)和支气管肺泡液(BALF)细菌负荷的分析表明,肺炎球菌仍局限于小鼠的鼻咽,而肺炎球菌肺炎的特点是细菌负担较高,50%的共感染小鼠肺内存在细菌(图一)。 3 D、E)。虽然是当地的(图中所示)。 3 (F)和系统性(如图所示)。 3 (G)三种感染均有炎症反应,各组间无显着性差异。
图3 轻度H1N1感染 S. 肺炎 19F定植小鼠不引起严重的混合感染。( A )雌性C57BL/6J小鼠经鼻腔定植 S. 肺炎 19F(1×10) 7 (CFU)持续7天,随后出现轻度H1N1感染(1×10) 5 (pfu;co-inf.)PBS攻击(PBS),仅定植(19F_C)和仅H1N1感染(H1N1)小鼠作为对照。此外,经鼻接种可诱发严重肺炎球菌性肺炎。 肺炎链球菌 19F(1×10) 8 CFU;19F_P;第8天)。( B )重量和( C )临床评分连续监测16天。B和C中的水平虚线表示实验的终止条件(20%的体重减轻和/或临床评分为20)。( D )洗鼻液中的CFU计数(NAL)和( E )在BALF中,( F )BALF和( G )处死动物后测定WBC。水平虚线( D )和( E )指出检测的限度。第16天处死动物,第10天处死肺炎组。每组4~6只小鼠进行两次独立实验(共n,≥8)。通常,显示平均值±sd( B , C )。每个点表示一个鼠标和水平线,显示平均值( D –F )。数据载于( G )显示为方框情节。用kruskal Wallis检验和Dunn‘s多重比较后检验(*)确定PBS与其他各组之间的显着性水平。 p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.001).
基于这些结果,我们假设早期的炎症反应可以帮助健康的小鼠摆脱病毒和混合感染中的严重疾病进展。所有动物均在病毒感染两天后出现临床症状前处死(图一)。 4 A和补充图。 S2 )。虽然在两组感染H1N1病毒的小鼠中都没有发现明显的疾病迹象,但50%的共感染小鼠肺部有细菌,并表现出较高的全身反应(补充图1)。 S2 )。此外,白细胞在共同感染小鼠的肺中大量流入,特别是细菌性肺炎组(补充图)。 S2 )。其次,测定肺和血浆中的细胞因子。细菌性肺炎导致细胞因子水平升高。 4 )。只有背景水平的IL-10和IL-12p70出现在所有感染动物(补充图)。 S3 )。虽然两个病毒感染组均无症状,但与单个细菌性肺炎相比,局部和系统地检测到几乎同样高的细胞因子水平,只有IL-1α除外。两种病毒感染均有相似的IL-1α水平。然而,IL-1α仅在肺内升高(如图所示)。 4 )。相反,所有感染小鼠的血浆和肺炎球菌肺炎组的肺部均检测到GM-CSF(附图)。 S3 ).
图4 局部和全身性细胞因子的产生对单一和混合感染的反应。( A )方案显示不同小鼠感染的时间线。小鼠在第9天被处死 B )CCL 2/MCP-1,( C )IL-1α,( D )IL-1β,和( E 检测肺和血浆IL-6水平。每组6只小鼠进行两次独立实验(共12只)。数据显示为方框图。用kruskal Wallis检验和Dunn‘s多重比较后检验(*)确定PBS与其他各组之间的显着性水平。 p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.001).
不同感染对肺部髓系细胞组成及其表型的影响 虽然单一病毒和共同感染的动物是临床上无症状的,但在肺部发现了一种炎症细胞因子反应。这促使我们探索肺部髓系细胞亚群的组成。为了区分血管和肺泡间质/肺间隔,小鼠静脉注射标记CD 45抗体。因此,CD 45 嗨 细胞被定义为来自血管和CD 45的细胞。 罗氏 肺泡/间质室的细胞。细胞亚群被进一步分类,如附图所示。 S4 .
一般来说,在细菌性肺炎组的两个肺室中,收集到的中性粒细胞和单核细胞的频率升高(如图所示)。 5 A、B)。中性粒细胞内流在合并感染中略有增加(图1)。 5 a)。相反,在两种病毒感染的肺中检测到更多的单核细胞(图一)。 5 b)。对单核细胞亚群的分析表明,单核细胞总数的增加可能与炎症/经典单核细胞的流入有关,而非经典单核细胞的频率在所有感染中都减少了(图一)。 5 c)。对常住巨噬细胞的分析表明,在疾病的早期,病毒感染不会导致AMs和IMS的耗尽。相反,严重的细菌感染导致这两种细胞类型的急剧下降(如图所示)。 5 D、E)。基于当前的模型 8 ,对IMS的三个亚组进行了检测(附图)。 S4 )。无论感染类型如何,IM2频率均下降。相反,IM3频率在所有细菌感染中都增加了(图一)。 5 f)。此外,在共感染小鼠中只检测到pDC的频率升高(如图所示)。 5 g)。相比之下,疾病预防控制中心的总人数仍未受到合并感染的影响。然而,单一的病毒和细菌感染的特点是CDCs数量减少(图一)。 5 h)。CD11b亚群体分析显示CD11b的频率 + CDCs在所有感染病例中增加,而CD 103则增加。 + CDCs大部分未受影响(图1)。 5 i)。
图5 肺部的天然免疫细胞组成,对单感染和混合感染的反应。感染如( A )。感染后第9天,取肺,消化,用流式细胞仪分析产生的单细胞悬液。CD 45 罗氏 细胞分为肺泡/间质室和CD 45细胞。 嗨 细胞是来自肺血管室的细胞。频率( A )中性粒细胞(PMN),( B )总单核细胞和( C )单核细胞亚群,( D )肺泡巨噬细胞(AMS),( E )间质巨噬细胞(IMS)和( F )IM子集,( G )浆细胞样树突状细胞(PDC),( H )常规区议会(CDCS),及( I )显示CDC子集。每组6只小鼠进行两次独立实验(共n只,≥10只)。每个点代表一个鼠标,条形表示中值。用kruskal Wallis检验和Dunn‘s多重比较后检验(*)确定PBS与其他各组之间的显着性水平。 p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.001).
天然免疫细胞进入感染部位主要是通过CC趋化因子受体2(CCR 2)检测CCL 2。 24 。此外,驻地细胞和被招募细胞通过MHCII呈递抗原,从而促进适应性免疫应答。 25 。因此,对这两种活化标记进行了分析。MHCII和CCR 2表达中性粒细胞、AMs和CCR 2的频率升高 + IM1主要在单个细菌和共感染小鼠的肺中检测到(如图所示)。 6 )。然而,在大多数细胞群体中,表达MHCII和CCR 2的天然免疫细胞亚群的频率没有显着性差异(附图)。 S5 )。为了更详细地研究MHCII和CCR 2的表型,我们分析了MHCII和CCR 2在所有细胞上的表达水平。 7 )。在间质/肺泡间隔内,AMs、CD 103的MHCII和CCR 2水平升高。 + CDCS和pDC在所有感染中。CD11b + 疾病预防控制中心显示这两种分子在共感染中都有上调作用(如图所示)。 7 )。而在IM3中,这两种蛋白在病毒感染中都被上调,而在单个细菌感染中则有相反的调节。此外,单核细胞的特点是两种分子对大多数感染的反应水平较低(图一)。 7 )。在血管室内,只有中性粒细胞显示单个细菌和合并感染时MHCII和CCR 2水平升高(见图)。 7 ).
图6 扩大MHCII + 和CCR 2 + 先天免疫细胞对细菌和病毒感染的反应。感染情况如图所示。 5 A.标记阳性细胞(上面板)和MHCII(中面板)和CCR 2(下面板)表达细胞的代表直方图。这些数据汇总了以下各方的答复: A )中性粒细胞,( B )肺泡巨噬细胞(AMS)和( C )1型间质巨噬细胞(IM1)。每个点代表一个鼠标,条形表示中值(n≥8)。用kruskal Wallis检验和Dunn‘s多重比较后检验(*)确定PBS与其他各组之间的显着性水平。 p < 0.05; **p < 0.01; ***p < 0.001).
图7 天然免疫细胞在肺部感染早期表现出增强的活性。( A )流式细胞分析的代表直方图,显示平均荧光强度(MFI)和( B 标记细胞亚群相对MFI表达的热图分析(n≥8)。用kruskal Wallis检验和Dunn‘s多重比较后检验(*)确定PBS与其他各组之间的显着性水平。 p < 0.05; "p < 0.01; # p < 0.001).