C5a-L-适配体对C5a诱导的PMN趋化作用及对小鼠PT+HS体内效应的影响
NoxD 21是一种聚乙二醇PEGylated L-适配体,能同时与C5和C5a结合,从而有效地阻断C5a。31。这种L-适配体由40 kDa PEG修饰而成,使其循环半衰期增加.首先,我们进行了体外实验,以确定NoxD 21对PMN趋化作用的抑制作用。1a)。对照(Ctrl)为PEGylated反转适配体revNOX-D21(通称Ctrl),不与C5a结合。用C5a(100 ng/mL)孵育和不加C5a(100 ng/mL)处理,分别测定两种浓度的NOX-D21和对照(分别为0.76mol/L和7.6mol/L的10μg/mL和10 0μg/mL)。C5a与C5a共同孵育可显著降低PMN的趋化性,而与C5a共孵育的L-适配体则无明显的趋化作用(图1)。1a)。
图1C5a抑制L-适体可降低PMN的体外趋化性,但不影响PT+HS小鼠模型的生命特性。(A用NoxD 21和对照(Ctrl;反向NoxD 21或rev NoxD 21)评价其对PMN趋化性的影响。FU代表荧光单位。(B)PT+HS模型的原理图。(C)地图测量,(D)血红蛋白浓度,(E)PT+HS动物产生HS的血流量及(F)假手术组和PT+HS组复苏后所需的儿茶酚胺总量。为(C)和(D)采用学生-Newman-Keul后自组织分析进行双向方差分析,其中**和*分别表示p<0.001和p<0.001,并与相应的假手术组进行比较。为(E)和(F)Kruskal-Wallis检验采用Dunn‘s后专案分析,其中**和*分别为p<0.0 1和p<0.001.0 1,与PT+HS组比较.每组动物均为8~11只。
随后,我们在体内进行了PT+HS仿真实验。11在小鼠体内观察适体对炎症反应和器官功能的影响。由于NoxD 21能够在体外有效地阻断C5a的功能效应,因此我们将此阻断策略应用于PT后早期的全身炎症反应中,这一策略至今尚未被探索。实验分为4组:假手术组(Ctrl组)、假手术组(NoxD 21组)、PT+HS组(Ctrl组)和PT+HS组(NoxD 21组)。如上文所述,所有动物都进行了仪器测试和观察。8,在材料、方法和图中。1B.麻醉Sham动物,放置动脉和静脉导管,不引起PT或缺血。观察HS诱导后平均动脉压(MAP)的变化。1(C)献血者血液中血红蛋白浓度。1(D)诱发HS的抽血量(见图)。1(E)和儿茶酚胺的总需要量(如图所示)。1(F)Ctrl组与NoxD 21组比较,PT+HS组无明显差异。这表明PT+HS是在动物体内均匀进行的,其生命状态不受NoxD 21阻断C5a的影响。
如前所述,肺被认为是多发伤的主要靶点和效应器官,尤其是当伤的一部分涉及钝性胸部创伤时。获得Balf,以确定一系列炎症标志物。PT+HS小鼠BAL中总蛋白含量明显高于假手术小鼠,说明C5a阻断对PT+HS小鼠早期屏障功能障碍无明显影响。2a)。C5a-L-适配体处理的PT+HS组BALF中PMN含量较高(图1)。2(B),白细胞介素(IL)-6。2(C),IL-1β。2(E)和IL-17(图1)。2(F)与Ctrl处理的PT+HS小鼠组相比,NoxD 21组小鼠的水平显著升高(图1)。2c)。尽管NoxD 21处理的PT+HS小鼠的BALF肿瘤坏死因子TNF-α水平高于Ctrl处理的PT+HS小鼠,但这一趋势没有统计学意义(图1)。2d)。肺损伤通过循环Clara细胞分泌蛋白16(CC 16)水平检测,但由于PT+HS动物体内C5a阻滞,这些水平没有改变。2g)。
图2PT+HS模型BAL-液(BALF)的促炎标记物和中性粒细胞的募集。(A)BALF中的总蛋白。Kruskal-Wallis试验采用Dunn的后专案分析。*表示PT+HS组与其相应的假队列比较时p<0.001。(B)BAL的PMN招募。在PT+HS组中进行t检验。PT+HS和假手术动物与Kruskal-Wallis试验比较,*=p<0.001。(C)BALF中IL-6含量。对PT+HS组进行Man-Whitney秩和检验.(D)肿瘤坏死因子-α,(E)IL-1β和(F)BALF中的IL-17。为(E)和(F),用Dunn‘s后自组织分析法进行Kruskal-Wallis检验,当PT+HS组与假手术组比较时,分别表示P<0.05和P<0.01。为比较Ctrl处理与NoxD 21处理的PT+HS样本,进行了学生t检验。每组动物的所有测量值为6-9。G)血浆中的CC 16。采用双因素方差分析,将PT+HS组与相应的假手术组进行比较,结果表明:PT+HS组与相应的假手术组比较,P<0.05。每组动物7-9只。H–K)福尔马林固定石蜡包埋的Sham(Ctrl处理)、Sham(NoxD 21处理)、PT+HS(Ctrl处理)和PT+HS(NoxD 21处理)小鼠肺组织形态学观察。肺泡内细胞浸润用黑色箭头表示,RBCs用蓝色箭头表示。每组8~12只肺染色,每组有一幅有代表性的图像。图像放大倍数为×40。BAR=50毫米(L–O)福尔马林固定石蜡包埋的Sham(Ctrl处理)、Sham(NoxD 21处理)、PT+HS(Ctrl处理)和PT+HS(NoxD 21处理)小鼠肺组织髓过氧化物酶(MPO)染色,检测肺内中性粒细胞的吸收和活性。浸润的粒细胞(黑箭头标记)、肺泡上皮细胞和末梢细支气管上皮细胞均呈MPO阳性染色。每组共染色4例,每组1例。图像为40×放大。巴=100公厘。
为进一步评估PT+HS对肺的影响,对福尔马林固定的石蜡包埋肺切片进行苏木精和伊红染色(H&E;图一)。2用MPO染色检测中性粒细胞活性。2与假手术组比较,PT+HS小鼠肺的肺泡间隔增厚,免疫细胞浸润、纤维蛋白沉积和肺泡出血增多(图1)。2(h-K)而Ctrl处理与NoxD 21处理的PT+HS小鼠肺在H&E染色切片的组织学评价上无明显差异。此外,PT+HS动物肺有较强的免疫细胞浸润(以黑箭头表示)和肺泡内出血,如红血球(RBCs)所示(用蓝色箭头表示)(如图所示)。2(j,k)。为了确定NoxD 21处理对中性粒细胞的吸收和/或活性是否有影响,对Sham和PT+HS小鼠的肺切片进行MPO染色(图1)。2L-O)。Ctrl处理的PT+HS小鼠MPO水平较高,主要见于浸润性免疫细胞、肺泡上皮细胞和终末细支气管衬里的上皮细胞。2(n,O)。NoxD 21处理的PT+HS小鼠肺三种细胞类型的MPO染色均降低(图1)。2o)。因此,尽管肺内的细胞因子水平较高,但由于NoxD 21的治疗,PT+HS动物中性粒细胞的MPO生成似乎受到了调节。
实验结果表明,应用NoxD 21抑制C5a活性在PT+HS后早期可诱导肺内促炎症细胞因子反应,而不影响肺屏障功能。
体外肺泡毛细血管屏障模型的建立
在体内观察的基础上,我们建立了肺泡毛细血管屏障的体外模型,对远端肺环境的细胞组成进行了深入分析,并专门研究了C5a对肺泡毛细血管屏障的作用和C5a L-适配体的有效阻断作用。内皮细胞(HPMEC-ST1.6R)和肺泡上皮Ⅰ型(HAELVi)32)细胞和原代II型(ATII)细胞生长在Transwell过滤器插入物的相反侧。一个连续的播种方案导致了合流内皮和上皮片的形成(如图所示)。3a)。完全建立的体外肺泡毛细血管模型类似于体内屏障的功能特征。第15天,上皮细胞形成紧密的吸收上皮。由肺泡Ⅰ型hAELVi细胞和原代ATII细胞组成的上皮片显示紧密连接蛋白ZO-1(ZO-1)、ATII标志ABCa3和ATI标志小窝蛋白1(图1)的显著表达。3b)。内皮细胞和上皮细胞的三重共培养与单纯的内皮细胞和内皮-hAELVi培养相比,也显著增加了经皮阻力(TEER)和明显减少了肺泡表面液体(ASL)的体积(图1)。3c)。100μM ATP诱导板层体(LB)胞外增生症完全建立的屏障模型33,34,这是ATII细胞的功能标志。35(无花果)3d)。
图3体外肺泡毛细血管屏障。(A) 左,中:屏障模型的代表性方案。内皮细胞和肺泡上皮细胞在可渗透滤器插入物的两侧生长。右:共聚焦重建内皮(蓝色)和上皮(细胞)生长在滤器插入15d。用LysotrackerRed染色。标尺=20μm.B免疫染色显示紧密连接标志ZO-1在上皮细胞中表达。用ABCa 3转运体标记ATII细胞的LB膜,而Caveolin 1(Caveolin 1)是ATI细胞的标记物,Hoechst染色表明ATII细胞为细胞核。下面的图像在上面图像中虚线的位置通过屏障文化描绘一个z段。标尺=50μm.C) 顶部:顺序播种协议的时间线。左下角:在指定的文化时期,Teer值。右下角:ASL值在指定的培养时间。价值来自18-80个不同的文化。*表示与第2天比较的统计意义。(D1 0 0μM ATP刺激上皮细胞后,可诱导ATII细胞板层小体的胞吐,新分泌的肺表面活性物质经FM1-43(箭头)选择性染色表明。标尺=20μm。
PMN加重体外肺泡毛细血管屏障损伤
为了评估体外肺泡毛细血管屏障的损伤,我们连续监测了TEER的变化,观察了各种病原体和损伤相关分子标记物(PAMPS和DAMP)和/或PMN(图1)对肺泡毛细血管屏障损伤的影响。4a)。为此,我们区分了NB44天后,这些细胞对N-甲酰基-蛋氨酸-Leu-Phe(FMLP)或佛波醇12-肉豆蔻酸-13-乙酸酯(PMA)完全有反应。4b)。初步实验显示,加入一种成熟的含c5a的多创伤鸡尾酒(Ptc)。36)或1μg/mL LPS后,在前4小时内可使TEER升高,随后下降。PTC或LPS的添加作用仅在16h后才能观察到,未处理组为102.7±2.8%(n=14),PTC和LPS组分别为85.9±3.8%(n=12)和52.8±1.7%(n=6)(见图)。4c)。与活体模型相比,时间进程较慢可能是由于创伤挑战(PTC而不是机械创伤和HS)和免疫细胞组成(如巨噬细胞缺乏)的差异所致。针对这些差异,我们在系统中加入了中性粒细胞样NB4细胞。NB4细胞的存在使PTC处理的NB4细胞的屏障损伤明显加重(分别为85.9±3.8%和68.5±6.5%,在NB4细胞不存在或有NB4细胞的情况下分别为68.5±6.5%和68.5±6.5%)。我们还分析了PTC的个别成分对屏障损伤的影响(图1)。4d)。然而,即使在NB4细胞存在的情况下,包括C5a在内的单个因素也没有导致TEER显著降低,从而导致屏障损伤(图1)。4d)。
图4屏障损伤的表征。(A在NB4细胞存在的情况下,代表个体培养物的TEER测量。在t=0(刺激)时加入PTC(C5a、C3a、IL1β、L-6和IL-8)。(B)中性粒细胞样分化NB4细胞的氧化爆发反应。NB4细胞分化为粒细胞系,用5M细胞松弛素B预处理30 min后,应用SOD抑制细胞色素c还原试验。奥2−还原铁3+细胞色素c,产生色移(在545 nm处增加吸光度,而535 nm处增加吸光度)。草皮消耗O2−生产H2O2从而避免了细胞色素c的降低。图中描述了试验样品与SOD处理对照样品吸光度变化的差异。PMA诱导O增加2−NB4细胞分化4天(灰度固体线),而未分化细胞不能产生O。2−刺激时(灰色虚线)。FMLP还能激活强烈的氧化爆发反应(黑线)。(C定量分析NB4细胞在不存在(左)或有无(右)的情况下,加入PTC或1μg/mlLPS后TEER的变化。数据在刺激后16h表示为TEER,在t=0时归一化为TEER。数值来源于6-14种不同的文化。#表示与各自控制条件相比的统计意义。*在NB4细胞不存在(左)或有无(右)的情况下比较培养时的统计学意义。(D定量分析NB4细胞加入C3a、C5a或PTC单个组分后TEER的变化。数据以刺激后16h的TEER表示,t=0。价值来自7-13个不同的文化。*表示与对照相比的统计意义。
C5a-阻断剂不能挽救pmn或ptc引起的肺泡屏障损伤。
最后,我们评估了特定的C5a中和是否能挽救PTC和NB4细胞所致的屏障损伤。在最初的实验中,我们证实C5a中和NoxD 21和Ctrl本身并不显著影响阻隔完整性。16h后,NoxD 21和Ctrl处理的TEER分别为初始TEER的85.6±10.7%(n=6)和98.19±13.9%(n=6)。在Ctrl或NoxD 21存在下,肺泡毛细血管培养物暴露于PTC和NB4细胞后,TEER与单纯PTC和NB4相比,TEER无明显增加(获救)。在Ctrl和NoxD 21存在下,Teer值分别为74.1±11.92%(n=6)和83.3±7.2%(n=7)。5)。结果表明,在NB4细胞存在的情况下,单独与C5a共同孵育16h后,无论是C5a还是PTC中和C5a均不对PTC诱导的屏障减少有保护作用。
图5C5a L-适配体对PMN和PTC所致肺泡屏障的损伤无明显作用。NB4细胞存在和PTC缺失(左)或无(右)时,单个培养物中加入Ctrl或NoxD 21后TEER变化的定量分析。数据以刺激后16h的TEER表示,t=0。价值来源于6-13种不同的文化。
C5aR1或C5aR2缺乏症可部分缓解PT+HS后早期肺部炎症反应
与PTC孵育4h后,TEER初步降低,NB4细胞的加入进一步加重了TEER的下降,而NoxD 21抑制C5a则未见明显改善。因此,我们想确定C5a受体的缺失对创伤后下游的损伤和炎症反应有什么影响。NoxD 21可同时阻断C5aR1和C5aR2的活性。然而,由于缺乏这两种受体的小鼠无法进入,因此使用了两种不同的基因敲除变异体,即C5aR1(以下简称C5aR1 KO)或C5aR2(称为C5aR2KO)。
年龄和性别匹配的雄性C57BL6野生型(WT)、C5aR1 KO和C5aR2 KO小鼠接受PT+HS或假手术。在多发创伤后早期,PT+HS组的WT和C5aR缺乏小鼠的MAP和血流量无明显差异(图二)。6A、B)。C5aR缺乏的PT+HS小鼠对儿茶酚胺的总需求量高于WT PT+HS小鼠。6d)。由于C5aR2 KOPT+HS小鼠采血量比C5aR1KOPT+HS组少约20%,因此C5aR2 KOPT+HS小鼠血红蛋白含量比C5aR2 KOPT+HS小鼠高出近20%(图二)。6c)。总蛋白浓度(图1.7(A)和PMN计数(图1)。7B)不同PT+HS治疗组BALF无明显变化。IL-6水平(图1.7C)在没有C5aR 2的情况下明显减弱(如图所示)。7(C),并在测试时检测IL-17(如图所示)。7(D)C5aR2KOPT+HS小鼠BALF较WT PT+HS小鼠明显降低。如先前发现的,与药理C5a抑制,没有C5aRs不影响循环水平的肺损伤标志CC16(图1)。7e)。PT+HS后小鼠肺形态可再次表现为水肿性肺泡间隔、免疫细胞增多和红细胞浸润(图1、C5aR1、KO、C5aR2KO)。7(f-K)。在NoxD 21处理的PT+HS小鼠中观察到的情况(见图)。2L-O),C5aR 1或C5aR 2的缺失导致PT+HS小鼠肺浸润粒细胞及肺泡和末梢细支气管上皮细胞MPO染色减少(图1)。7M,N)与WT小鼠比较(图1)。7l)。由于假肺MPO染色阴性,未见WT、C5aR1、KO和C5aR2KO假肺。
图6野生型、C5aR1和C5aR2基因敲除小鼠在假手术或PT+HS后的生命状态。(A)地图测量在不同的时间点,(B)PT+HS动物产生HS的血流量,(C)血液血红蛋白和(D)将血压维持在50±5 mmHg所需的儿茶酚胺总量。为(C)采用单因素方差分析和Newman-Keul后专案分析,对WT和C5aR2、C5aR1KO和C5aR2、KPT+HS动物分别进行*和#表示p<0.05的分析。(D儿茶酚胺需要量恢复MAP≥50 mmHg。在PT+HS组中,采用单因素方差分析方法,对WT、C5aR1KO和C5aR2 KO动物进行单因素方差分析,结果表明P<0.05。
图7C5aR1和C5aR2基因敲除PT+HS小鼠均表现为BAL-6和IL-17减弱,但不改变PMN的吸收。BAL样本被测试为(A)PMN的数目,(B)总蛋白质含量,(C)IL-6和(D)IL-17。(E)血浆CC 16水平。Kruskal-Wallis试验采用Dunn后特别分析,其中*,表示p<0.0 5,*表示p<0.001,并与相应的PT+HS组比较,与WT PT+HS组比较P<0.0 5。(F–K福尔马林固定、石蜡包埋的Sham(WT)、Sham(C5aR1 KO)、Sham(C5aR2 KO)、PT+HS(WT)、PT+HS(C5aR1KO)和PT+HS(C5aR2KO)小鼠肺组织形态进行H&E染色。肺泡内细胞浸润用黑色箭头表示,RBCs用蓝色箭头表示。每组8~12只肺染色,每组有一幅有代表性的图像。图像为40×放大。BAR=50毫米(L–N福尔马林固定石蜡包埋PT+HS(WT)、PT+HS(C5aR1 KO)和PT+HS(C5aR2KO)小鼠MPO染色,检测肺内中性粒细胞的吸收和活性。浸润的粒细胞(黑箭头标记)、肺泡上皮细胞和末梢细支气管上皮细胞均呈MPO阳性染色。每组共染色4例,每组1例。图像放大倍数为×40。巴=100公厘。